Olink NextSeq 2000 สำรวจลำดับ

บันทึกเอกสาร
คู่มือผู้ใช้ Olink® Explore เอกสาร nr 1153 ล้าสมัยและถูกแทนที่ด้วยเอกสารต่อไปนี้:

• Olink® สำรวจมากกว่าview คู่มือผู้ใช้ doc nr 1187
• คู่มือผู้ใช้ Olink® Explore 384, doc nr 1188
• คู่มือผู้ใช้ Olink® Explore 4 x 384, doc nr 1189
• คู่มือผู้ใช้ Olink® Explore 1536 & Expansion, doc nr 1190
• คู่มือผู้ใช้ Olink® Explore 3072, doc nr 1191
• Olink®สำรวจลำดับโดยใช้คู่มือผู้ใช้ NextSeq 550, doc nr 1192
• Olink®สำรวจลำดับโดยใช้คู่มือผู้ใช้ NextSeq 2000, doc nr 1193
• Olink®สำรวจลำดับโดยใช้คู่มือผู้ใช้ NovaSeq 6000, เอกสารหมายเลข 1194

การแนะนำ

จุดประสงค์การใช้
Olink® Explore เป็นแพลตฟอร์มอิมมูโนแอสเซย์แบบมัลติเพล็กซ์สำหรับการค้นพบไบโอมาร์คเกอร์โปรตีนของมนุษย์ ผลิตภัณฑ์นี้มีวัตถุประสงค์เพื่อใช้ในการวิจัยเท่านั้น ไม่ใช่สำหรับใช้ในขั้นตอนการวินิจฉัย งานในห้องปฏิบัติการจะต้องดำเนินการโดยเจ้าหน้าที่ห้องปฏิบัติการที่ได้รับการฝึกอบรมเท่านั้น การประมวลผลข้อมูลจะดำเนินการโดยเจ้าหน้าที่ที่ได้รับการฝึกอบรมเท่านั้น นักวิจัยจะใช้ผลลัพธ์นี้ร่วมกับผลการวิจัยทางคลินิกหรือห้องปฏิบัติการอื่นๆ
เกี่ยวกับคู่มือนี้
คู่มือผู้ใช้นี้มีคำแนะนำที่จำเป็นในการจัดลำดับ Olink® Explore Libraries บน Illumina® NextSeq™ 2000 ต้องปฏิบัติตามคำแนะนำอย่างเคร่งครัดและชัดเจน การเบี่ยงเบนใด ๆ ตลอดขั้นตอนในห้องปฏิบัติการอาจส่งผลให้ข้อมูลบกพร่อง ก่อนเริ่มเวิร์กโฟลว์ในห้องปฏิบัติการ โปรดปรึกษา Olink® Explore Overview คู่มือผู้ใช้สำหรับคำแนะนำเบื้องต้นเกี่ยวกับแพลตฟอร์ม รวมถึงข้อมูลเกี่ยวกับน้ำยา อุปกรณ์ และเอกสารประกอบที่จำเป็น และอื่นๆview ของขั้นตอนการทำงานตลอดจนแนวทางห้องปฏิบัติการ สำหรับคำแนะนำเกี่ยวกับวิธีเรียกใช้ Olink® Explore Reagent Kits โปรดดูคู่มือผู้ใช้ Olink® Explore ที่เกี่ยวข้อง สำหรับการประมวลผลข้อมูลและการวิเคราะห์ผลลัพธ์ของลำดับ Olink® Explore โปรดดูที่คู่มือผู้ใช้ Olink® NPX Explore เครื่องหมายการค้าและลิขสิทธิ์ทั้งหมดที่มีอยู่ในเนื้อหานี้เป็นทรัพย์สินของ Olink® Proteomics AB เว้นแต่จะระบุไว้เป็นอย่างอื่น
การสนับสนุนด้านเทคนิค
สำหรับการสนับสนุนด้านเทคนิค โปรดติดต่อ Olink Proteomics ที่ support@olink.com.

คำแนะนำในห้องปฏิบัติการ

บทนี้ให้คำแนะนำเกี่ยวกับวิธีการจัดลำดับ Olink Libraries บน NextSeq™ 2000 โดยใช้ NextSeq™ 1000/2000 P2 Reagents (100 Cycles) v3 โปรโตคอลที่ใช้สำหรับการจัดลำดับเป็นการดัดแปลงเวิร์กโฟลว์ NGS มาตรฐานของ Illumina® สำหรับ Illumina® NextSeq™ 2000
ก่อนดำเนินการจัดลำดับ ตรวจสอบให้แน่ใจว่าได้ตรวจสอบคุณภาพของ Olink Library ที่บริสุทธิ์แล้ว โปรดดูคู่มือผู้ใช้ Olink Explore ที่เกี่ยวข้องสำหรับคำแนะนำเกี่ยวกับการควบคุมคุณภาพ
วางแผนการรันลำดับ
สามารถจัดลำดับไลบรารี Olink หนึ่งรายการต่อโฟลว์เซลล์ NextSeq™ 2000 P2 และต่อการรัน จำนวนของโฟลว์เซลล์ P2 และการทำงานที่จำเป็นในการจัดลำดับชุดรีเอเจนต์สำรวจ Olink ต่างๆ ได้อธิบายไว้ในตารางที่ 1
หากจำเป็นต้องรันมากกว่า XNUMX ครั้ง ให้ทำซ้ำตามคำแนะนำที่อธิบายไว้ในคู่มือนี้
ตารางที่ 1. การวางแผนการรันลำดับ

ชุดรีเอเจนต์สำรวจ Olink®	จำนวนห้องสมุด Olink	จำนวนโฟลว์เซลล์และรัน
ชุดรีเอเจนต์ Olink® Explore 384	1	1
Olink® Explore 4 x 384 ชุดรีเอเจนต์	4	4
ชุดรีเอเจนต์ Olink® Explore 1536	4	4
Olink® Explore ชุดรีเอเจนต์ส่วนขยาย	4	4
ชุดรีเอเจนต์ Olink® Explore 3072	8	8

เตรียมสูตร Olink® Custom
ในระหว่างขั้นตอนนี้ มีการเตรียมสูตรอาหารแบบกำหนดเองของ Olink® ใน NextSeq™ 2000 ขั้นตอนนี้ต้องทำเพียงครั้งเดียวเท่านั้น ก่อนที่จะดำเนินการรันลำดับ Olink ในครั้งแรก
เปิดเครื่องรูดและบันทึก XML สูตรที่กำหนดเอง Olink-file Olink_NSQ2K_P2_V1 ในโฟลเดอร์เครื่องดนตรีที่เหมาะสม
บันทึก: สูตรเฉพาะของ Olink จะใช้งานได้กับชุดรีเอเจนต์ NextSeq™ 1000/2000 P2 (100 รอบ) v3 และซอฟต์แวร์ควบคุม NextSeq™ 1000/2000 v1.2 หรือ v1.4 เท่านั้น

เตรียมน้ำยาลำดับ
ในระหว่างขั้นตอนนี้ รีเอเจนต์สำหรับการทำคลัสเตอร์และการจัดลำดับจะถูกละลายและเตรียมโฟลว์เซลล์

คำเตือน: ตลับตัวทำปฏิกิริยาประกอบด้วยสารเคมีที่อาจเป็นอันตราย สวมอุปกรณ์ป้องกันอย่างเพียงพอและทิ้งน้ำยาที่ใช้แล้วตามมาตรฐานที่บังคับใช้ สำหรับข้อมูลเพิ่มเติม โปรดดูคู่มือระบบ Illumina NextSeq 1000 และ 2000 (เอกสาร #1000000109376)

เตรียมตลับน้ำยา
การละลายคาร์ทริดจ์ที่ยังไม่เปิดทำได้โดยใช้สามวิธี: ที่อุณหภูมิห้อง ในอ่างน้ำที่มีการควบคุม หรือในตู้เย็น

เตรียมม้านั่ง

• 1x NextSeq™ 1000/2000 P2 ตลับรีเอเจนต์ (100 รอบ)

คำแนะนำ
ละลายตลับตัวทำปฏิกิริยาตามที่อธิบายไว้ในตารางที่ 2
ตารางที่ 2 วิธีการละลายตลับรีเอเจนต์

วิธีการละลาย	คำแนะนำ
ที่อุณหภูมิห้อง	• โดยไม่ต้องเปิดถุงฟอยล์สีเงิน วางตลับน้ำยาแช่แข็งไว้บนม้านั่งแล้วละลายที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 9 ชั่วโมง ห้ามเกิน 16 ชม. • ตรวจสอบให้แน่ใจว่าฉลากของถุงหงายขึ้นและอากาศสามารถไหลเวียนรอบๆ ตลับหมึกได้
ในอ่างน้ำ	• โดยไม่ต้องเปิดถุงฟอยด์สีเงิน ให้วางรีเอเจนต์แช่แข็งแช่ไว้ครึ่งหนึ่งในอ่างน้ำที่มีอุณหภูมิ 25°C และปล่อยให้ละลายเป็นเวลา 6 ชั่วโมง ห้ามเกิน 8 ชม. • ตรวจสอบให้แน่ใจว่าฉลากของถุงหงายขึ้นและตลับหมึกไม่กลับด้านระหว่างการละลาย • เช็ดตลับหมึกให้แห้งด้วยผ้ากระดาษ
ในตู้เย็น	• โดยไม่ต้องเปิดถุงฟอยล์สีเงิน วางตลับหมึกไว้บนม้านั่งแล้วละลายที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 6 ชั่วโมง • ตรวจสอบให้แน่ใจว่าฉลากของถุงหงายขึ้นและอากาศสามารถไหลเวียนรอบๆ ตลับหมึกได้ • เสร็จสิ้นการละลายตลับหมึกในตู้เย็นเป็นเวลา 12 ชั่วโมง ห้ามเกิน 72 ชม. • ก่อนการทำงาน ให้นำคาร์ทริดจ์ที่ยังไม่ได้เปิดที่ละลายแล้วออกจากตู้เย็น และปล่อยให้อุณหภูมิถึงอุณหภูมิห้องอย่างน้อย 15 นาที แต่ไม่เกิน 1 ชั่วโมง

บันทึก: คาร์ทริดจ์ที่ละลายแล้วไม่สามารถแช่แข็งใหม่ได้ และต้องเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 4 °C เป็นเวลาสูงสุด 72 ชั่วโมง

เตรียมโฟลว์เซลล์ เตรียมม้านั่ง

• 1x NextSeq™ 1000/2000 P2 โฟลว์เซลล์

คำแนะนำ

1. นำโฟลว์เซลล์ที่แช่เย็นไว้ที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 10-15 นาที

เตรียม Olink® Library สำหรับการจัดลำดับ

ในระหว่างขั้นตอนนี้ Olink Library ที่บริสุทธิ์และควบคุมคุณภาพจะถูกเจือจางจนถึงความเข้มข้นของการโหลดขั้นสุดท้าย โปรดทราบว่าการเสียสภาพห้องสมุดจะดำเนินการโดยอัตโนมัติบนเครื่องมือ
เตรียมม้านั่ง

• Lib Tube จัดทำขึ้นตามคู่มือผู้ใช้ Olink Explore ที่เกี่ยวข้อง
• 1x RSB พร้อมทวีน 20
• น้ำมิลลิคิว
• 2x หลอดไมโครเซนติฟิวจ์ (1.5 มล.)
• ปิเปตแบบแมนนวล (10, 100 และ 1000 ไมโครลิตร)
• ปลายหลอดกรอง

ก่อนที่คุณจะเริ่มต้น

• ละลาย Lib Tube หากแช่แข็ง
• ละลาย RSB ที่แช่แข็งด้วย Tween 20 ที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 10 นาที เก็บที่อุณหภูมิ +4 °C จนกว่าจะใช้
• ทำเครื่องหมายหลอดไมโครเซนติฟิวจ์ขนาด 1.5 มล. ใหม่สองหลอดดังนี้:
  • ทำเครื่องหมาย "Dil" หนึ่งหลอด (สำหรับ Library ที่เจือจาง 1:100)
  • ทำเครื่องหมาย XNUMX หลอด “Seq” (เพื่อพร้อมโหลด Library)

คำแนะนำ

1. เติมน้ำ MilliQ 495 ไมโครลิตรลงใน Dil Tube
2. Vortex the Lib Tube แล้วหมุนลงชั่วครู่
3. ถ่ายโอน 5 ไมโครลิตรจาก Lib Tube ไปยัง Dil Tube ด้วยตนเอง
4. Vortex the Dil Tube แล้วหมุนลงชั่วครู่
5. เติม RBS 20 μL ด้วย Tween 20 ลงใน Seq Tube
6. ถ่ายโอน 20 ไมโครลิตรจาก Dil Tube ไปยัง Seq Tube ด้วยตนเอง
7. Vortex the Seq Tube แล้วหมุนลงชั่วครู่
8. ไปที่ 2.5 ทันที โหลดโฟลว์เซลล์และ Olink® Library ลงในตลับรีเอเจนต์ หมายเหตุ: เก็บ Lib Tube ไว้ที่อุณหภูมิ -20 °C ในกรณีที่มีโอกาสเกิดซ้ำ

โหลดโฟลว์เซลล์และ Olink® Library ลงในตลับรีเอเจนต์
ในระหว่างขั้นตอนนี้ โฟลว์เซลล์และ Olink Library ที่เจือจางจะถูกโหลดลงในคาร์ทริดจ์รีเอเจนต์ที่ละลายแล้ว
เตรียมม้านั่ง

• 1x ละลาย NextSeq™ 1000/2000 P2 ตลับรีเอเจนต์ (100 รอบ) ที่เตรียมในขั้นตอนก่อนหน้า
• 1x NextSeq™ 1000/2000 P2 Flow Cell ที่เตรียมไว้ในขั้นตอนก่อนหน้า
• Sex Tube (พร้อม Olink Library เจือจางพร้อมโหลด) ที่เตรียมไว้ในขั้นตอนก่อนหน้า
• ปิเปตแบบแมนนวล (100 ไมโครลิตร)
• ปลายปิเปต (1 มล.)

เตรียมตลับหมึก

1. นำตลับหมึกออกจากถุงฟอยล์สีเงิน
2. กลับด้านตลับหมึกสิบครั้งเพื่อผสมรีเอเจนต์ที่ละลายอยู่ภายในอย่างทั่วถึง

บันทึก: เป็นเรื่องปกติที่จะได้ยินเสียงกริ๊งของส่วนประกอบภายใน

ใส่โฟลว์เซลล์ลงในคาร์ทริดจ์

1. เมื่อพร้อมที่จะโหลดโฟลว์เซลล์ลงในคาร์ทริดจ์ ให้นำโฟลว์เซลล์ออกจากบรรจุภัณฑ์ ถือโฟลว์เซลล์ที่แท็บสีเทา โดยให้ฉลากบนแท็บหงายขึ้น ใช้ถุงมือใหม่แบบไม่มีแป้งเพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนพื้นผิวแก้วของโฟลว์เซลล์
2. ใส่โฟลว์เซลล์เข้าไปในช่องโฟลว์เซลล์ที่ด้านหน้าของคาร์ทริดจ์ เสียงคลิกบ่งชี้ว่าวางโฟลว์เซลล์อย่างถูกต้อง
3. ดึงแถบสีเทาออกโดยดึงออก

ใส่ Olink® Library ลงในตลับหมึก

1. เจาะอ่างเก็บน้ำ Library ด้วยปลายปิเปต 1 มล. ที่สะอาด
2. โหลด 20 μL ของ Olink Library จาก Seq Tube ไปที่ด้านล่างของที่เก็บไลบรารี

ดำเนินการรันลำดับ Olink®
ในระหว่างขั้นตอนนี้ คาร์ทริดจ์บัฟเฟอร์ที่มีโฟลว์เซลล์ที่โหลดและไลบรารี Olink จะถูกโหลดลงใน NextSeq™ 2000 และการรันลำดับจะเริ่มต้นโดยใช้สูตร Olink
เตรียมม้านั่ง

• 1x NextSeq™ 1000/2000 P2 Reagent Cartridge (100 รอบ) ที่โหลดด้วย NextSeq™ 1000/2000 P2 Flow Cell และ Olink Library ที่เจือจาง ซึ่งเตรียมไว้ในขั้นตอนก่อนหน้า

กำหนดค่าโหมดการทำงาน

1. จากเมนูซอฟต์แวร์ควบคุม เลือก การตั้งค่า
2. ภายใต้ BaseSpace Sequence Hub Services & Proactive Support เลือก Local Run Setup
3. เลือก Proactive Support Only เป็นการตั้งค่าเพิ่มเติม ฟังก์ชันนี้ต้องการการเชื่อมต่ออินเทอร์เน็ต
4. เลือกตำแหน่งโฮสต์สำหรับข้อมูลของคุณ ตำแหน่งโฮสติ้งควรอยู่ในหรือใกล้กับภูมิภาคของคุณ
5. ตั้งค่าตำแหน่งโฟลเดอร์ผลลัพธ์สำหรับการเรียกใช้ข้อมูลดิบในปัจจุบัน เลือก เลือก เพื่อนำทางและเลือกโฟลเดอร์ผลลัพธ์
6. เลือกช่องทำเครื่องหมาย Denature and Dilute On Board เพื่อทำลายธรรมชาติและเจือจาง Library บนเครื่องมือโดยอัตโนมัติ
7. เลือกช่องทำเครื่องหมาย Purge Reagent Cartridge เพื่อไล่สารรีเอเจนต์ที่ไม่ได้ใช้ไปยังช่องน้ำยารีเอเจนต์ที่ใช้แล้วของคาร์ทริดจ์โดยอัตโนมัติ
8. เลือกช่องทำเครื่องหมาย Autocheck for software updates เพื่อตรวจหาการอัปเดตซอฟต์แวร์โดยอัตโนมัติ (ไม่บังคับ) ฟังก์ชันนี้ต้องการการเชื่อมต่ออินเทอร์เน็ต
9. เลือกบันทึก

ตั้งค่าพารามิเตอร์การวิ่ง

บันทึก: คำแนะนำนี้ใช้กับซอฟต์แวร์ควบคุม NextSeq™ 1.4/1000 เวอร์ชัน 2000 บางขั้นตอนที่อธิบายด้านล่างอาจแตกต่างออกไปเมื่อใช้เวอร์ชัน v1.2

1. จากเมนูซอฟต์แวร์ควบคุม เลือก เริ่ม
2. เลือก ตั้งค่ารันใหม่ด้วยตนเอง แล้วกด ตั้งค่า
3. ในหน้า Run Setup ให้ตั้งค่าพารามิเตอร์ run ดังนี้:

• ในฟิลด์ชื่อการทดสอบ ให้ป้อนรหัสการทดสอบที่ไม่ซ้ำ
• ในรายการดรอปดาวน์ ประเภทการอ่าน ให้เลือกตัวเลือก อ่านครั้งเดียว

ใส่จำนวนรอบดังนี้

• • อ่าน 1: 24
  • ดัชนี 1: 0
  • ดัชนี 2: 0
  • อ่าน 2: 0

บันทึก: สิ่งสำคัญคือต้องตั้งค่า Read 1 เป็น 24 มิฉะนั้นการรันทั้งหมดจะล้มเหลว
บันทึก: ไม่ต้องสนใจข้อความเตือนเมื่อป้อนจำนวนรอบ

• ในรายการดรอปดาวน์ Custom Primer Wells ให้เลือก No
• ในฟิลด์ สูตรอาหารแบบกำหนดเอง (ไม่บังคับ) เลือก เลือก เพื่อนำทางและเลือก XML สูตรอาหารแบบกำหนดเอง file Olink_NSQ2K_P2_V1. เลือกเปิด
• ห้ามนำเข้าสampเลอชีท.
• ตรวจสอบให้แน่ใจว่าตำแหน่งโฟลเดอร์ผลลัพธ์ถูกต้อง มิฉะนั้น ให้เลือก เลือก เพื่อนำทางและเลือกตำแหน่งโฟลเดอร์ผลลัพธ์ที่ต้องการ
• ในฟิลด์ Denature and Dilute Onboard ให้เลือก Enabled จากรายการดรอปดาวน์
• เลือกเตรียม

ใส่ตลับหมึกที่โหลดไว้

1. เลือกโหลด ที่บังแผงหน้าปัดเปิดขึ้นและเลื่อนถาดออกมา
2. วางคาร์ทริดจ์ที่ใส่ไว้ในถาดโดยหงายฉลากขึ้นและโฟลว์เซลล์ด้านในเครื่องมือ
3. เลือกปิด
4. เมื่อโหลดคาร์ทริดจ์อย่างถูกต้องแล้ว ให้ตรวจสอบพารามิเตอร์การทำงานและเลือก Sequence เครื่องมือจะทำการตรวจสอบก่อนการทำงานสำหรับเครื่องมือและฟลูอิดิกส์
   บันทึก: ในระหว่างการตรวจสอบฟลูอิดิกส์ คาดว่าจะได้ยินเสียงดังหลายครั้ง
5. ตรวจสอบให้แน่ใจว่าเริ่มทำงานหลังจากการตรวจสอบก่อนการทำงานอัตโนมัติเสร็จสิ้น (ประมาณ 15 นาที) เวลารันลำดับคือประมาณ 10h30 นาที
   บันทึก: สำหรับความล้มเหลวในการตรวจสอบก่อนรัน โปรดดูคำแนะนำจากผู้ผลิต
   บันทึก: ระวังอย่าชนหรือรบกวน NextSeq™ 2000 ในระหว่างการรันลำดับ เครื่องมือมีความไวต่อการสั่นสะเทือน
6. ทำความสะอาดพื้นที่ทำงาน

ตรวจสอบความคืบหน้าในการเรียกใช้
Olink ใช้ NGS เป็นค่าที่อ่านได้เพื่อหาปริมาณของลำดับที่ทราบเพื่อประเมินความเข้มข้นของโปรตีนที่กำหนดใน samples (เทียบกับ s อื่น ๆampเลส). คุณภาพข้อมูลจากการรันลำดับ Explore แต่ละครั้งถูกกำหนดโดยพารามิเตอร์ QC เฉพาะของเทคโนโลยี Olink เป็นหลัก ดังนั้น เมตริกการควบคุมคุณภาพมาตรฐานที่ใช้ใน NGS ทั่วไป เช่น Q-score จึงมีความสำคัญน้อยกว่า
นำคาร์ทริดจ์ออกและทิ้งหลังจากการรัน

คำเตือน: น้ำยาชุดนี้ประกอบด้วยสารเคมีที่อาจเป็นอันตราย สวมอุปกรณ์ป้องกันอย่างเพียงพอและทิ้งน้ำยาที่ใช้แล้วตามมาตรฐานที่บังคับใช้ สำหรับข้อมูลเพิ่มเติม โปรดดูคู่มือระบบ Illumina NextSeq 1000 และ 2000 (เอกสาร #1000000109376)

1. เมื่อดำเนินการเสร็จสิ้น ให้เลือกนำคาร์ทริดจ์ออก
   บันทึก: คาร์ทริดจ์ที่ใช้แล้วรวมถึงโฟลว์เซลล์สามารถทิ้งไว้ได้จนกว่าจะใช้งานครั้งต่อไป แต่ไม่เกิน 3 วัน
2. นำตลับหมึกออกจากถาด
3. กำจัดรีเอเจนต์ตามมาตรฐานที่บังคับใช้
4. เลือกปิดประตู ใส่ถาดใหม่แล้ว
5. เลือกหน้าแรกเพื่อกลับไปที่หน้าจอหลัก
   บันทึก: เนื่องจากคาร์ทริดจ์มีกลไกทั้งหมดในการรันระบบ เช่นเดียวกับอ่างเก็บน้ำสำหรับเก็บรีเอเจนต์ที่ใช้แล้ว จึงไม่จำเป็นต้องล้างเครื่องมือหลังการทำงาน

ประวัติการแก้ไข

เวอร์ชัน	วันที่	คำอธิบาย
1.1	2022-11-01	1.2 แทนที่ Olink® Mydata ด้วย Olink® NPX Explore 2.2 แก้ไขแล้ว
1.0	2021-12-01	ใหม่

www.olink.com
สำหรับใช้ในการวิจัยเท่านั้น ห้ามใช้ในขั้นตอนการวินิจฉัย
ผลิตภัณฑ์นี้มีใบอนุญาตสำหรับการใช้ผลิตภัณฑ์ Olink ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์ ผู้ใช้เชิงพาณิชย์อาจต้องมีใบอนุญาตเพิ่มเติม โปรดติดต่อ Olink Proteomics AB สำหรับรายละเอียด ไม่มีการรับประกันใด ๆ ไม่ว่าโดยชัดแจ้งหรือโดยปริยาย ซึ่งครอบคลุมเกินกว่าคำอธิบายนี้ Olink Proteomics AB ไม่รับผิดชอบต่อความเสียหายต่อทรัพย์สิน การบาดเจ็บส่วนบุคคล หรือการสูญเสียทางเศรษฐกิจที่เกิดจากผลิตภัณฑ์นี้

เครื่องหมายการค้าต่อไปนี้เป็นของ Olink Proteomics AB: โอลิงค์®
ผลิตภัณฑ์นี้อยู่ภายใต้สิทธิบัตรหลายฉบับและคำขอรับสิทธิบัตรที่ https://www.olink.com/patents/.

© ลิขสิทธิ์ 2021 Olink Proteomics AB เครื่องหมายการค้าของบุคคลที่สามทั้งหมดเป็นทรัพย์สินของเจ้าของที่เกี่ยวข้อง Olink Proteomics, Dag Hammarskjölds väg 52B , SE-752 37 Uppsala, สวีเดน 1193, v1.1, 2022-11-01

เอกสาร / แหล่งข้อมูล

Olink NextSeq 2000 สำรวจลำดับ [พีดีเอฟ] คู่มือการใช้งาน NextSeq 2000 สำรวจลำดับ NextSeq 2000 สำรวจลำดับ ลำดับ

อ้างอิง

• คู่มือการใช้งาน