BIOSENSORS heliX cyto dynamic ຄູ່ມືຜູ້ໃຊ້ລະບົບການວິເຄາະຫ້ອງທົດລອງອັດຕະໂນມັດຢ່າງເຕັມສ່ວນ

ລະບົບ heliX cyto ຖືກອອກແບບມາສໍາລັບ Cytometry Interaction Cytometry ເຊນດຽວ (scIC) ເພື່ອວັດແທກ kinetics ການຜູກມັດຂອງໂມເລກຸນທີ່ມີສະຫຼາກ fluorescently ກັບເປົ້າຫມາຍເທິງຫນ້າຂອງເຊນໃນລັກສະນະທີ່ກໍານົດເວລາ.

ຄໍາແນະນໍາການນໍາໃຊ້ຜະລິດຕະພັນ

ໃຊ້ heliXcyto Chip

ຊິບ heliXcyto ມີຊ່ອງ microfluidic ດຽວທີ່ມີຈຸດ electrode ສໍາລັບການຈັບແລະວັດແທກຈຸລັງ. ຮັບປະກັນການຈັດວາງຊິບໃຫ້ຖືກຕ້ອງ ແລະປະຕິບັດຕາມຄໍາແນະນໍາສໍາລັບການຈັບຈຸລັງ.

ຊິບບໍາລຸງຮັກສາ

ໃຊ້ Maintenance Chip ສໍາລັບການທໍາຄວາມສະອາດ, ການທົດສອບ, ແລະການດໍາເນີນງານການບໍາລຸງຮັກສາເທົ່ານັ້ນ. ຫຼີກເວັ້ນການນໍາໃຊ້ມັນສໍາລັບການທົດລອງເພື່ອປ້ອງກັນການປົນເປື້ອນ.

ແລ່ນ Buffer

ໃຊ້ Running Buffer 1 (RB 1) ໃນລະຫວ່າງການວັດແທກ. ເບິ່ງເອກະສານຄວາມເຂົ້າກັນໄດ້ຂອງ scIC ໃນຄູ່ມືຫຼັກສໍາລັບຂໍ້ມູນລະອຽດ.

ການວິເຄາະ Sensorgram

ຕິດຕາມກວດກາ sensorgram ໃນເວລາຈິງໃນຊອບແວ heliOS ໃນລະຫວ່າງການວັດແທກ. ວິເຄາະການຕອບສະໜອງ fluorescent ໃນໄລຍະເວລາເພື່ອສະກັດອັດຕາ kinetic.

Passivation

ພິຈາລະນາໃຊ້ passivation ເປັນຂັ້ນຕອນທາງເລືອກເພື່ອປ້ອງກັນການດູດຊຶມການວິເຄາະໂດຍການ incubating reagent passivation ໃນຊິບ.

ການເຮັດໃຫ້ເປັນປົກກະຕິ

Normalization ແມ່ນຂະບວນການເພື່ອມາດຕະຖານຂໍ້ມູນສໍາລັບການປຽບທຽບແລະການວິເຄາະ. ປະຕິບັດຕາມຂັ້ນຕອນການເຮັດໃຫ້ເປັນປົກກະຕິຕາມຄູ່ມືຜູ້ໃຊ້.

ແນະນຳ

ຄູ່ມືນີ້ຫມາຍເຖິງໄລຍະສັ້ນview ຂອງລະບົບ heliXcyto ແລະຄວາມສາມາດຂອງມັນ. ບົດທັງຫມົດແມ່ນໄດ້ຂະຫຍາຍຢູ່ໃນຄູ່ມື heliXcyto ຕົ້ນຕໍທີ່ພົບເຫັນຢູ່ https://www.dynamic-biosensors.com/helios-download-latest/

heliXcyto Terminology ປະຕິສໍາພັນຈຸລັງດຽວ Cytometry

single-cell Interaction Cytometry (scIC) ແມ່ນເທັກໂນໂລຍີທີ່ວັດແທກ kinetics ການຜູກມັດຂອງໂມເລກຸນທີ່ມີສະຫຼາກ fluorescent (ການວິເຄາະ) ກັບເປົ້າຫມາຍ (ligand) ເທິງຫນ້າເຊນໂດຍການບັນທຶກສັນຍານ fluorescent ໃນເວລາແກ້ໄຂ.

ວິເຄາະ

Analyte ແມ່ນໂມເລກຸນທີ່ມີປ້າຍ fluorescently ໃນໄລຍະມືຖືທີ່ສາມາດຜູກມັດກັບເປົ້າຫມາຍເທິງຫນ້າຂອງເຊນ.

ລີແກນ

Ligand” ແມ່ນຊື່ທີ່ໃຊ້ໃນຊອຟແວ heliOS ເພື່ອພັນລະນາເປົ້າໝາຍຢູ່ໃນຜິວຂອງເຊລທີ່ຕົວວິເຄາະສາມາດຜູກມັດໄດ້. ອັນນີ້ອາດຈະເປັນໂມເລກຸນ receptor, lipid, ນໍ້າຕານ ຫຼືໂມເລກຸນຜິວຂອງເຊລອື່ນ.

Cell Trap

ຊ່ອງໃສ່ກັບດັກເຊລແມ່ນສາມາດໄຫຼເຂົ້າໄດ້, ຊ່ອງໂພລີເມີທີ່ເຂົ້າກັນໄດ້ທາງຊີວະພາບຢູ່ໃນຊິບ heliXcyto. ພວກມັນຖືກອອກແບບເພື່ອຈັບແລະ immobilize ຈຸລັງທີ່ມີຂະຫນາດທີ່ແຕກຕ່າງກັນປະມານ 6 ຫາ 25 µm ໃນຊ່ອງທາງການໄຫຼ. ຈັ່ນຈັບຈຸລັງມີຢູ່ໃນ 3 ຂະຫນາດທີ່ແຕກຕ່າງກັນ: ຂະຫນາດນ້ອຍ, ຂະຫນາດກາງແລະຂະຫນາດໃຫຍ່.

ຊິບ heliXcyto

ຊິບ heliXcyto ມີຊ່ອງ microfluidic ດຽວທີ່ມີຊ່ອງເປີດຢູ່ແຕ່ລະດ້ານ. ສອງຈຸດ electrode ທອງແມ່ນຕັ້ງຢູ່ເຄິ່ງກາງຂອງຊ່ອງທາງ.

ຈຸດຫນຶ່ງເຮັດຫນ້າທີ່ເປັນຈຸດອ້າງອິງ, ແລະຈຸດທີສອງແມ່ນບັນຈຸໂພລີເມີທີ່ເຂົ້າກັນໄດ້ 3D ສໍາລັບການຈັບຈຸລັງແລະເຮັດຫນ້າທີ່ເປັນຈຸດວັດແທກ. ຈຸດວັດແທກສາມາດບັນຈຸ 1 ຫຼື 5 ກັບດັກຂອງປະເພດດຽວກັນ.
ຈຸດອ້າງອິງອະນຸຍາດໃຫ້ອ້າງອີງໃນເວລາຈິງຂອງສັນຍານ fluorescent ທີ່ເກັບກໍາ. ຊິບ heliXcyto ສາມາດນໍາມາໃຊ້ຄືນໄດ້ແລະໃຊ້ແລ້ວຖິ້ມ.

ຊິບບໍາລຸງຮັກສາ

Maintenance Chip ແມ່ນຊິບ microfluidic ຊ່ອງດຽວທີ່ໃຊ້ສໍາລັບການທໍາຄວາມສະອາດ, ການທົດສອບແລະການບໍາລຸງຮັກສາທັງຫມົດ.
ການປະຕິບັດການເຫຼົ່ານີ້ລວມມີການທໍາຄວາມສະອາດ & ນອນເປັນປົກກະຕິ, ການຕື່ນນອນແລະປະຈໍາວັນທີ່ສໍາຄັນ, ການລ້າງລະບົບແລະການທົດສອບ Fluidics. ຊິບນີ້ບໍ່ຄວນໃຊ້ສໍາລັບການທົດລອງຕົວຈິງກັບເຊລ/ໂປຣຕີນເພື່ອປ້ອງກັນການປົນເປື້ອນຂອງຊິບຕື່ມອີກ.

ແລ່ນ Buffer

Running buffer ແມ່ນ buffer ທີ່ໃຊ້ໃນ heliXcyto ໃນລະຫວ່າງການວັດແທກ. ການນໍາໃຊ້ Running Buffer 1 (RB 1) ໂດຍທົ່ວໄປແມ່ນແນະນໍາ.
ກະລຸນາເບິ່ງເອກະສານຄວາມເຂົ້າກັນໄດ້ຂອງ scIC ທີ່ພົບໃນຄູ່ມືຫຼັກສໍາລັບຂໍ້ມູນເພີ່ມເຕີມ.

ເຊັນເຊີ

ເຊັນເຊີ scIC ແມ່ນແຜນການຕອບສະ ໜອງ fluorescence ໃນການນັບຕໍ່ວິນາທີ (cps) ໃນໄລຍະເວລາ, ສະແດງເຖິງຄວາມຄືບຫນ້າຂອງປະຕິສໍາພັນໃນຫຼືຢູ່ໃນຈຸລັງ. ເສັ້ນໂຄ້ງນີ້ສາມາດເປັນ viewed ໃນເວລາທີ່ແທ້ຈິງໃນ heliOS ໃນລະຫວ່າງການວັດແທກ.
ໃນເວລາທີ່ການວິເຄາະ sensorgrams, exponential ທີ່ເຫມາະສົມທີ່ດີທີ່ສຸດກັບຮ່ອງຮອຍ fluorescent ທີ່ສັງເກດເຫັນແມ່ນຖືກກໍານົດແລະອັດຕາ kinetic (kon, koff) ສະກັດ.

Passivation

Passivation ແມ່ນຂັ້ນຕອນທາງເລືອກໃນການແລ່ນ, ບ່ອນທີ່ reagent passivation ໄດ້ຖືກສີດໃສ່ຊິບແລະ incubated ເພື່ອສະກັດຫນ້າດິນ. ນີ້ສາມາດຊ່ວຍປ້ອງກັນການດູດຊຶມຂອງການວິເຄາະໃນວັດສະດຸຊິບ.

ການເຮັດໃຫ້ເປັນປົກກະຕິ

ຂັ້ນຕອນການປັບຕົວປົກກະຕິແມ່ນໃຊ້ເພື່ອບັນຊີສໍາລັບຄວາມແຕກຕ່າງເລັກນ້ອຍຂອງສັນຍານເນື່ອງຈາກການລວບລວມສັນຍານຈາກແຕ່ລະຈຸດວັດແທກໂດຍເຄື່ອງກວດຈັບແຍກຕ່າງຫາກ. ສີຍ້ອມ fluorescent ຂອງຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນທີ່ກໍານົດໄວ້ (ອີງໃສ່ຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງການວິເຄາະສູງສຸດແລະລະດັບການຕິດສະຫຼາກການວິເຄາະ) ແມ່ນຖືກສີດໃນຕອນເລີ່ມຕົ້ນຂອງການວິເຄາະ. ຂັ້ນຕອນການປັບຕົວປົກກະຕິນີ້ແມ່ນຖືກລວມເຂົ້າໂດຍອັດຕະໂນມັດໃນວິທີການວັດແທກ, ແລະຈຸດສູງສຸດຂອງຄວາມເປັນປົກກະຕິທີ່ວັດແທກໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອແກ້ໄຂອັດຕະໂນມັດສໍາລັບຄວາມແຕກຕ່າງລະຫວ່າງເຄື່ອງກວດຈັບໃນລະຫວ່າງການວິເຄາະຂໍ້ມູນ, ກ່ອນທີ່ຈະອ້າງອີງໃນເວລາທີ່ແທ້ຈິງ.

ຫຼັກການວັດແທກ scIC

ຄໍາຮ້ອງສະຫມັກ scIC

cytometry ການໂຕ້ຕອບຂອງເຊນດຽວ (scIC) ວັດແທກອັດຕາ kinetic ແລະຄວາມໃກ້ຊິດຂອງການວິເຄາະທີ່ມີປ້າຍ fluorescently ຜູກມັດແລະ unbinding ຈາກເປົ້າຫມາຍຂອງມັນໂດຍກົງຕໍ່ຈຸລັງທີ່ມີຊີວິດ.
ການກວດຫາການວິເຄາະໃນ scIC ແມ່ນບໍ່ຂຶ້ນກັບຂະໜາດ ແລະດັ່ງນັ້ນຈຶ່ງກ່ຽວຂ້ອງກັບໂມເລກຸນໃດນຶ່ງຈາກ sub-nm ຫາ > 100 nm ແລະກ່ຽວຂ້ອງກັບກຸ່ມໂມເລກຸນທັງໝົດຈາກໂມເລກຸນນ້ອຍ, peptides, aptamers, nanobodies, affibodies, antibodies, bispecific antibody formats, proteins, upsides, proteins nanoparticles, ແລະໄວຣັສ.

ເທກໂນໂລຍີ scIC ສາມາດແກ້ໄຂພື້ນທີ່ຄໍາຮ້ອງສະຫມັກດັ່ງຕໍ່ໄປນີ້:

ການວັດແທກຂອງສັນຍານ amplitudes ໃນຫນ້າຈໍຜູກມັດ
ການວິເຄາະ kinetic ຂອງອັດຕາ kon ແລະ koff
ການປະເມີນຄວາມສະໜິດສະໜົມ ແລະ ຄວາມຢາກຮູ້ຜ່ານຕົວແບບທີ່ເໝາະສົມກັບຄອຟ ແລະ biphasic
ການທົດສອບສະເພາະ
ປະລິມານທີ່ສົມທຽບຂອງທາດໂປຼຕີນຈາກເຍື່ອຢູ່ດ້ານຂອງເຊນ
epitope binning ແລະການສຶກສາການແຂ່ງຂັນ
ການທົດສອບ inhibition
ການປະເມີນພາຍໃນຂອງທາດໂປຼຕີນຈາກເປົ້າຫມາຍ

ຄວາມສາມາດຂອງຮາດແວ heliXcyto

ລະບົບນໍ້າລາຍ

ລະບົບ fluidic ຂອງ heliXcyto ໄດ້ຖືກປ້ອນໂດຍເຖິງ 3 ຂວດ buffer ທີ່ແຕກຕ່າງກັນ, ເຮັດໃຫ້ການປ່ຽນແປງໃນການແລ່ນແລະການບໍາລຸງຮັກສາ buffer. Pumps ໃນ heliXcyto ສາມາດກໍານົດອັດຕາການໄຫຼລະຫວ່າງ 20 ແລະ 500 µL / ນາທີ, ສະຫນອງໃຫ້ແກ່ s ທີ່ແຕກຕ່າງກັນ.ample ແລະຂໍ້ກໍານົດການທົດສອບ. ຊ່ອງທາງການໄຫຼຂອງ chip ເຊື່ອມຕໍ່ກັບລະບົບ fluidic ຜ່ານສອງເປີດ. ການເປີດດ້ານຊ້າຍແມ່ນເຊື່ອມຕໍ່ກັບ sample, buffer, ແລະລ້າງສາຍ, ໃນຂະນະທີ່ການເປີດດ້ານຂວາແມ່ນເຊື່ອມຕໍ່ກັບສາຍການຟື້ນຟູ.

ລະບົບ fluidic ສອງທາງນີ້ເຮັດໃຫ້ການຈັບພາບເຊນທີ່ຫມັ້ນຄົງໃນຂະນະທີ່ແລ່ນຂັ້ນຕອນການວັດແທກທີ່ແຕກຕ່າງກັນແລະໃນທີ່ສຸດການຟື້ນຕົວຂອງຊິບສໍາລັບການນໍາໄປໃຊ້ຊິບໃນການກວດສອບຄືນໃຫມ່.
ຮູບທີ 1. ການເຊື່ອມໂຍງຊິບໃນລະບົບ Fluidic

ລະບົບ Optical

ສັນຍານ fluorescence ຕື່ນເຕັ້ນໂດຍ diodes ປ່ອຍແສງສີແດງແລະສີຂຽວ (LEDs) ແລະກວດພົບໂດຍສີ່ເຄື່ອງນັບ photon ດຽວ, ເຊິ່ງເກັບກໍາສັນຍານສີແດງແລະສີຂຽວຈາກແຕ່ລະຈຸດຕະຫຼອດຄວາມເລິກເຕັມຂອງຊ່ອງ.

ສອງສັນຍານເອກະລາດສາມາດຖືກກວດສອບພ້ອມໆກັນຢູ່ໃນຈຸດວັດແທກດຽວກັນ, ອະນຸຍາດໃຫ້ສອງການໂຕ້ຕອບສາມາດຖືກວັດແທກໃນຄັ້ງດຽວໃນການຕັ້ງຄ່າການທົດສອບສອງສີ.
ຮູບທີ 2. ການຕັ້ງຄ່າ Optics
ການເກັບກໍາສັນຍານຈາກແຕ່ລະຈຸດວັດແທກແມ່ນຈັດການໂດຍເຄື່ອງກວດຈັບແຍກຕ່າງຫາກ, ເຊິ່ງອາດຈະເຮັດໃຫ້ມີຄວາມແຕກຕ່າງເລັກນ້ອຍໃນການນັບດິບ. ເພື່ອບັນຊີສໍາລັບການນີ້, ຂັ້ນຕອນການປົກກະຕິຈະຖືກລວມເຂົ້າໃນການວິເຄາະການສ້າງຂໍ້ມູນໂດຍອັດຕະໂນມັດ.

ນອກເໜືອໄປຈາກເຄົາເຕີໂຟຕອນດຽວ, ເຄື່ອງມືຍັງມີກ້ອງ CCD ແລະກ້ອງຈຸລະທັດສະທ້ອນໃຫ້ເຫັນແສງສະຫວ່າງ. ເຄື່ອງມືເຫຼົ່ານີ້ອະນຸຍາດໃຫ້ມີການຖ່າຍຮູບເຊນໃນເວລາຈິງ, ເຮັດໃຫ້ການປະເມີນຄວາມສົມບູນຂອງເຊນແລະຄຸນນະພາບການວິເຄາະຕະຫຼອດການວັດແທກ.
ການຕິດຕັ້ງແບບປະສົມປະສານນີ້ຮັບປະກັນການຕິດຕໍ່ພົວພັນແລະສະພາບທາງຊີວະພາບໄດ້ຖືກຕິດຕາມ, ສະຫນອງການປະເມີນຜົນທີ່ສົມບູນແບບຂອງການທົດລອງ.

ຂະບວນການເຮັດວຽກ scIC

ຂະບວນການວັດແທກ scIC ສາມາດແບ່ງອອກເປັນ 3 ຂັ້ນຕອນທີ່ສໍາຄັນ

ການອອກແບບທົດລອງໃນ heliOS: ການວັດແທກແຕ່ລະເລີ່ມຕົ້ນດ້ວຍການອອກແບບການທົດລອງໃນຊອບແວ heliOS. ຂັ້ນຕອນການເຮັດວຽກຂອງການວິເຄາະຖືກຕັ້ງຄ່າໂດຍການເລືອກວິທີການທີ່ກຳນົດໄວ້ລ່ວງໜ້າ ແລະປັບຕົວກໍານົດການທົດລອງເຊັ່ນ: ເສັ້ນຕາລາງທີ່ໃຊ້ແລ້ວ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງການວິເຄາະ ແລະເງື່ອນໄຂຂອງບັຟເຟີ. heliOS ອັດຕະໂນມັດຄິດໄລ່ປະລິມານທີ່ຊັດເຈນຂອງຈຸລັງ, ການວິເຄາະ, buffers, ແລະວິທີແກ້ໄຂອື່ນໆທີ່ຈໍາເປັນສໍາລັບການວັດແທກ, ປັບປຸງຂະບວນການກະກຽມ.
ການກະກຽມຂອງ buffers, ການວິເຄາະ, ແລະຈຸລັງ: ຫຼັງຈາກການອອກແບບທົດລອງໄດ້ຖືກສະຫຼຸບແລ້ວ, ວັດສະດຸທີ່ຈໍາເປັນໄດ້ຖືກກະກຽມຕາມຂໍ້ກໍາຫນົດໂດຍ heliOS. Buffers, ການວິເຄາະ, ແລະເຊລຖືກໂຫລດເຂົ້າໄປໃນອັດຕະໂນມັດຂອງເຄື່ອງມືampເລີ
ການວັດແທກ ແລະການວິເຄາະຂໍ້ມູນ: ລະບົບປະຕິບັດຊຸດການວັດແທກການໂຕ້ຕອບແບບອັດຕະໂນມັດຕາມເວລາຈິງທີ່ກໍານົດໄວ້ໂດຍບໍ່ຈໍາເປັນຕ້ອງມີການແຊກແຊງຕື່ມອີກຈາກຜູ້ໃຊ້. ຂໍ້ມູນສາມາດຖືກວິເຄາະໃນຂະນະທີ່ການວັດແທກຍັງດໍາເນີນການເພື່ອໃຫ້ມີຄວາມເຂົ້າໃຈໃນທັນທີກ່ຽວກັບຜົນໄດ້ຮັບ.

scIC Assays ໃນ heliOS

ນອກເຫນືອໄປຈາກການວິເຄາະການສ້າງຂໍ້ມູນ, ຊອບແວຍັງສະຫນອງວິທີການສໍາລັບການທົດສອບ chip, ທໍາຄວາມສະອາດແລະການບໍາລຸງຮັກສາເຄື່ອງມື.

ຕາຕະລາງ 1. ການກວດສອບການສ້າງຂໍ້ມູນ

scIC Kinetics	ວັດແທກ kinetics ເຕັມຢູ່ໃນຈຸລັງທີ່ມີການເຊື່ອມໂຍງການວິເຄາະທີ່ສາມາດປັບໄດ້ລະຫວ່າງ 1 ແລະ 5 ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນ, ຕິດຕາມດ້ວຍ dissociation ດຽວຫຼັງຈາກຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນສູງສຸດ. ຊ່ອງສີຂຽວ ຫຼືສີແດງ. ປະກອບມີທາງເລືອກສໍາລັບການທົດສອບການວິເຄາະເທົ່ານັ້ນ.
scIC Kinetics - ສອງສີ	ວັດແທກ kinetics ເຕັມຢູ່ໃນຈຸລັງທີ່ມີການເຊື່ອມໂຍງການວິເຄາະທີ່ສາມາດປັບໄດ້ລະຫວ່າງ 1 ແລະ 5 ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນ, ຕິດຕາມດ້ວຍ dissociation ດຽວຫຼັງຈາກຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນສູງສຸດ. ທັງສອງຊ່ອງສີຂຽວແລະສີແດງເປີດພ້ອມໆກັນ. ປະກອບມີທາງເລືອກສໍາລັບການທົດສອບການວິເຄາະເທົ່ານັ້ນ.
scIC Dissociation – ສອງສີ	ວັດແທກການແຍກຕົວຂອງການວິເຄາະຈາກຈຸລັງທີ່ໄດ້ຖືກອົບກ່ອນດ້ວຍເຄື່ອງວິເຄາະທີ່ມີປ້າຍກຳກັບ fluorescently ທີ່ມີຊ່ອງສີຂຽວ ແລະ/ຫຼື ສີແດງ.

ການກະກຽມແລະການພັດທະນາການວິເຄາະສໍາລັບການວັດແທກ scIC

ມີບາງຈຸດທີ່ຄວນພິຈາລະນາກ່ອນທີ່ຈະຕັ້ງການວັດແທກ scIC

ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງການວິເຄາະ, ລະດັບການຕິດສະຫຼາກ, ຄຸນສົມບັດ, ແລະຄຸນນະພາບ.
ການແກ້ໄຂປົກກະຕິແລະພະລັງງານຕື່ນເຕັ້ນ.
ຄຸນນະພາບຂອງເຊນແລະການຈັດການ.

ການວິເຄາະຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນແລະລະດັບການຕິດສະຫຼາກ

ອີງຕາມການປະຕິບັດການວັດແທກ kinetic ມາດຕະຖານ, ພວກເຮົາແນະນໍາໃຫ້ເລືອກລະດັບຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງ molar ການວິເຄາະຂອງ 0.1x ຫາ 10x ຂອງຄວາມສົມດຸນ dissociation ຄົງທີ່ຄາດໄວ້ (Kd) ສໍາລັບ kinetics ຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຫຼາຍ. ສໍາລັບການວັດແທກຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ kinetics ຫຼືການແຍກຕົວດຽວ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງການວິເຄາະຄວນຢູ່ລະຫວ່າງ 1x ແລະ 10x ຂອງ Kd ທີ່ຄາດໄວ້. ປະລິມານການວິເຄາະທີ່ຈໍາເປັນທີ່ຄິດໄລ່ສໍາລັບເວລາສະມາຄົມ 10 ນາທີທີ່ອັດຕາການໄຫຼຂອງ 25 µL / ນາທີທັງຫມົດປະມານ 300 µL.
ລະດັບການຕິດສະຫຼາກ (DOL) ສໍາລັບການວິເຄາະຄວນຈະເປັນ 1, ເຖິງແມ່ນວ່າຄ່າ DOL ຂອງ 2 ຫຼື 3 ແມ່ນຍັງຍອມຮັບໄດ້. ຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ຈົ່ງຮູ້ວ່າຈໍານວນປ້າຍທີ່ສູງຂຶ້ນໃນການວິເຄາະອາດຈະສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ຄຸນສົມບັດການຜູກມັດຂອງມັນ, ແລະອາດຈະເພີ່ມຄວາມເປັນໄປໄດ້ຂອງການລວບລວມຫຼືການຜູກມັດທີ່ບໍ່ສະເພາະ. ເພື່ອບັນລຸ DOL ທີ່ດີທີ່ສຸດ, ປະຕິບັດຕາມໂປໂຕຄອນທີ່ສະຫນອງໃຫ້ກັບຊຸດການຕິດສະຫລາກທີ່ມີສີຍ້ອມສີແດງຫຼືສີຂຽວຈາກເສັ້ນ reagents heliXcyto.
ການເຮັດໃຫ້ເປັນປົກກະຕິ
Normalization ແມ່ນຂັ້ນຕອນທໍາອິດໃນວິທີການສ້າງຂໍ້ມູນທັງຫມົດ. ມັນຊົດເຊີຍການປ່ຽນແປງສັນຍານເລັກນ້ອຍທີ່ເກີດຈາກການນໍາໃຊ້ເຄື່ອງກວດຈັບແຍກຕ່າງຫາກສໍາລັບແຕ່ລະຈຸດວັດແທກ. ໃນຂັ້ນຕອນນີ້, ສີຍ້ອມ fluorescent ໃນຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນທີ່ຜູ້ໃຊ້ກໍານົດແມ່ນໄດ້ຖືກສັກໃນຕອນເລີ່ມຕົ້ນຂອງການທົດສອບ.
ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງການແກ້ໄຂປົກກະຕິແມ່ນຄິດໄລ່ໂດຍການຄູນຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນຂອງການວິເຄາະທີ່ມີປ້າຍຊື່ fluorescently ສູງສຸດທີ່ໃຊ້ໃນການວັດແທກໂດຍລະດັບການຕິດສະຫຼາກຂອງນັກວິເຄາະ (DOL). ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນນີ້ນໍາພາພະລັງງານຄວາມຕື່ນເຕັ້ນ LED ທີ່ໃຊ້ໃນລະຫວ່າງການວັດແທກ. ເປົ້າໝາຍແມ່ນເພື່ອໃຫ້ຈຸດສູງສຸດຂອງ Normalization Solution ສາມາດບັນລຸໄດ້ປະມານສັນຍານ fluorescence ດຽວກັນ amplitude ເປັນຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງການວິເຄາະສູງສຸດ.
ເບິ່ງຕາຕະລາງຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງການແກ້ໄຂປົກກະຕິໃນຄູ່ມືຕົ້ນຕໍເພື່ອກໍານົດຄ່າເບື້ອງຕົ້ນ. ໃຫ້ສັງເກດວ່າຕາຕະລາງແນະນໍາການຕັ້ງຄ່າເບື້ອງຕົ້ນ, ແຕ່ພະລັງງານກະຕຸ້ນ LED ສາມາດປັບໄດ້ຕື່ມອີກໃນລະຫວ່າງການພັດທະນາການວິເຄາະ.

ຄຸນນະພາບຂອງເຊນແລະການກະກຽມ

ຄວາມເປັນໄປໄດ້ຂອງເຊລຄວນຈະສູງກວ່າ 95%, ແລະໂດຍທົ່ວໄປແລ້ວເຊລຄວນຈະຢູ່ໃນສະພາບທີ່ດີ. ສໍາລັບຈຸລັງທີ່ຕິດກັນ, ພວກເຮົາແນະນໍາໃຫ້ເຮັດວຽກກັບຈຸລັງທີ່ມີ 50-70% confluent.
ສໍາລັບຈຸລັງ suspension, ພວກເຮົາແນະນໍາໃຫ້ເກັບກ່ຽວຢູ່ໃນໄລຍະກາງຂອງການຂະຫຍາຍຕົວ. 50 µl ຂອງການລະງັບເຊລຢູ່ທີ່ 1E+06 ເຊລ/ມລ ແມ່ນຕ້ອງການຕໍ່ການແລ່ນ.

ການຂຸດຄົ້ນຈຸລັງ suspension

Centrifuge ປະມານ. 2E+06 ເຊລທີ່ 300 g ເປັນເວລາ 7 ນາທີເພື່ອເອົາເຊລວັດທະນະທໍາອອກ. ຍົກເລີກ supernatant ໄດ້.
ລ້າງເຊວໜຶ່ງຄັ້ງໂດຍການລະງັບເມັດເຊວຄືນໃໝ່ໃນປະມານ. 1 ມລຂອງ DPBS. Centrifuge suspension ໃນ 400 g ສໍາລັບ 5 ນາທີ pellet ຈຸລັງດໍາລົງຊີວິດ. ຖິ້ມສິ່ງມະຫັດສະຈັນຢ່າງລະມັດລະວັງເພື່ອເອົາຊິ້ນສ່ວນ ແລະສື່ຕ່າງໆອອກ.

ຄ່ອຍໆຄ້າງຄືນໃນ 1 mL ຂອງ DPBS, ໂອນ suspension ຢູ່ເທິງຂອງ cell strainer ແລະ strain suspension ໂດຍການໄຫຼຂອງແຮງໂນ້ມຖ່ວງ.
ວັດແທກຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງເຊວຂອງ suspension ທີ່ເຄັ່ງຕຶງ ແລະປັບເປັນ 1E+06 ເຊລ/ມລ.
- ເຄັດລັບ: ບາງຈຸລັງ suspension ມີແນວໂນ້ມທີ່ຈະປະກອບເປັນກຸ່ມ. ຍັບຍັ້ງກຸ່ມຄືນໃໝ່ຢ່າງຄ່ອຍໆ ແລະປະກອບຂັ້ນຕອນການບີບຕົວກ່ອນຂັ້ນຕອນການສູນພັນທຳອິດ.
- ໃຊ້ຄໍາແນະນໍາທໍ່ທໍ່ກວ້າງໃນເວລາຈັດການກັບການລະງັບຂອງເຊນເພື່ອຫຼີກເວັ້ນການແຮງຕັດສູງໃນລະຫວ່າງການໂອນຫຼືການລະງັບຄືນ.

ການເກັບກ່ຽວຈຸລັງທີ່ຕິດກັນ

ລ້າງຈຸລັງດ້ວຍ DPBS ທີ່ເປັນຫມັນ.
ແຍກເຊວອອກຈາກກະເປົ໋າປູກຝັງໂດຍໃຊ້ທາດປະຕິການແຍກຕົວທີ່ທ່ານຕ້ອງການ (ຕົວຢ່າງ: TrypLE).
ຢຸດເຊລທີ່ແຕກແຍກໃຫ້ກັບປະລິມານທີ່ມັກຂອງສື່ ແລະການກັ່ນຕອງດ້ວຍຕົວກັ່ນຕອງເຊລ 30nm.

ທາງເລືອກ, ເພີ່ມ EDTA ໃນກໍລະນີທີ່ມີຈຸລັງທີ່ຕິດກັນຢ່າງແຂງແຮງ (ຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນສຸດທ້າຍ 5 mM).
Centrifuge ຈຸລັງຢູ່ທີ່ 300 g ສໍາລັບ 7 ນາທີເພື່ອເອົາສື່ວັດທະນະທໍາຂອງເຊນ. ຍົກເລີກ supernatant ໄດ້.
ຢັບຢັ້ງເຊລໃຫ້ກັບ DPBS 1 ມລ.
ວັດແທກຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງເຊລ ແລະປັບເປັນ 1E+06 ເຊລ/ມລ.
- ເຄັດລັບ: ເຊລມີເດຍເຈືອຈາງ 1:4 ກັບ DPBS ສາມາດໃຊ້ເພື່ອເພີ່ມສານອາຫານໃຫ້ກັບເຊລໄດ້amples ໃນກໍລະນີຂອງຈຸລັງທີ່ລະອຽດອ່ອນຫຼືການເຮັດວຽກຂອງການວິເຄາະຍາວ.

ການສ້ອມແຊມເຊລ

Centrifuge ເຖິງ 10E+06 ເຊນທີ່ 300 g ສໍາລັບ 7 ນາທີເພື່ອເອົາສື່ວັດທະນະທໍາຂອງເຊນອອກ. ຍົກເລີກ supernatant ໄດ້.
ຢຸດເຊວເມັດໃນ 1 mL PBS, centrifuge ແລະຖິ້ມ supernatant.

ຢຸດເຊວເມັດໃນ 500 µL PBS/2% PFA (62.5 µL ຂອງ 16% PFA solution + 437.5 µL PBS).
Incubate ຈຸລັງຢູ່ທີ່ອຸນຫະພູມຫ້ອງສໍາລັບ 10 ນາທີ (ໂດຍມີການສັ່ນຢ່າງອ່ອນໂຍນເປັນໄລຍະ).
ຕື່ມ 500 µL ຂອງ PBS ແລະ centrifuge suspension ທີ່ 400 g ສໍາລັບ 5 ນາທີເພື່ອເອົາ PFA.

ຍົກເລີກ supernatant ໄດ້.
ຢຸດເຊວຄືນໃໝ່ໃນ 1 ມລ PBS, ກັ່ນຕອງຜ່ານຕົວບີບເຊນ 30 µm, centrifuge (400 g, 5 ນາທີ) ແລະຖິ້ມ supernatant.
ຢຸດເຊລຄືນໃໝ່ໃນປະມານ 1 mL ຂອງ PBS (ທາງເລືອກ: ປັບເປັນຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນສຸດທ້າຍຂອງ 5E+06 ເຊລ/ມລ).
ເກັບຮັກສາຈຸລັງຄົງທີ່ຢູ່ທີ່ 2-8 ° C, ໃຊ້ພາຍໃນຫນຶ່ງເດືອນ.
- ຖ້າຈຸລັງຫຼາຍຄວນຖືກແກ້ໄຂ, ກະລຸນາຂະຫຍາຍຈໍານວນທັງຫມົດຕາມຄວາມເຫມາະສົມ.
- ໝາຍເຫດ: ຄວາມໄວຂອງ centrifugation ໃນລະຫວ່າງການເກັບກ່ຽວຂອງຈຸລັງສາມາດຖືກປັບເປັນປະເພດເຊນ, ຖ້າຈຸລັງມີຄວາມອ່ອນໄຫວແລະຕ່ໍາ g-forces ຖືກນໍາໃຊ້ທົ່ວໄປ.
- ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ PFA ອາດຈະແຕກຕ່າງກັນລະຫວ່າງ 0.5 ແລະ 4%.

ການຕັ້ງຄ່າ scIC Assay

ການວິເຄາະ scIC ຕໍ່ໄປນີ້ຄວນຖືກລວມເຂົ້າໃນການພັດທະນາການວິເຄາະແລະສາມາດເຮັດຊ້ໍາໄດ້ພາຍໃນຂັ້ນຕອນການເຮັດວຽກຂອງການວິເຄາະໃນພາຍຫຼັງ.

ຂະບວນການພັດທະນາການວິເຄາະແມ່ນແບ່ງອອກເປັນ 3 ຂັ້ນຕອນຕິດຕໍ່ກັນ:

ການທົດສອບຊິບ Cyto
ວິເຄາະພຽງແຕ່ການທົດສອບ
ການທົດສອບ Kinetics

ການທົດສອບຊິບ Cyto

ຄຸນນະພາບຂອງຊິບໃໝ່ຕ້ອງໄດ້ຮັບການປະເມີນກ່ອນທີ່ຈະໃຊ້ຊິບ cyto ໃນການວັດແທກ. ເລີ່ມຕົ້ນດ້ວຍການທົດສອບ Cyto Chip ແຍກຕ່າງຫາກ. ເບິ່ງບົດຂອງຊິບ Helix cyto ໃນຄູ່ມືຕົ້ນຕໍກ່ຽວກັບວິທີການຕັ້ງຄ່າແລະປະເມີນການທົດສອບຊິບ.

ການວິເຄາະພຽງແຕ່ການທົດສອບ

ການພັດທະນາຂອງການວິເຄາະ scIC ເລີ່ມຕົ້ນດ້ວຍການທົດສອບການວິເຄາະເທົ່ານັ້ນ, ເຊິ່ງປະເມີນພຶດຕິກໍາຂອງການວິເຄາະທີ່ມີປ້າຍ fluorescently ຢູ່ໃນຫນ້າດິນ chip ສົດທີ່ບໍ່ມີຈຸລັງ.

ການທົດສອບນີ້ຍັງສາມາດຖືກເຮັດຊ້ໍາເປັນໄລຍະເພື່ອປະເມີນຄວາມຫມັ້ນຄົງຂອງການວິເຄາະທີ່ຕິດສະຫຼາກ. scIC Analyte Only Test ສາມາດຖືກກຳນົດຄ່າໃນ Kinetics assays ໂດຍການເປີດໃຊ້ງານ Analyte only checkbox ພາຍໃຕ້ການຕັ້ງຄ່າ Cell.
ສໍາລັບການປະເມີນຄຸນນະພາບການວິເຄາະ, ຄວາມເຂັ້ມຂົ້ນທີ່ໃຊ້ສູງສຸດແມ່ນພຽງພໍແລະສາມາດຕັ້ງຄ່າໄດ້ໂດຍການປິດການໃຊ້ງານທັງຫມົດແຕ່ຫນຶ່ງໃນສະມາຄົມໃນການວິເຄາະ.

ການຕິດຕັ້ງຂັ້ນຕອນການເຮັດວຽກຂອງ Kinetics Assay

ການວິເຄາະ kinetics ໂດຍປົກກະຕິແມ່ນຖືກນໍາໃຊ້ພາຍໃນຂະບວນການເຮັດວຽກອັດຕະໂນມັດທີ່ມີທັງການວິເຄາະການສ້າງຂໍ້ມູນເຊັ່ນດຽວກັນກັບອົງປະກອບບໍາລຸງຮັກສາ. ເມື່ອການວິເຄາະໄດ້ຜ່ານການທົດສອບການຄວບຄຸມຄຸນນະພາບເທົ່ານັ້ນ Analyte, ມັນສາມາດຖືກນໍາໃຊ້ໃນການວັດແທກໃນຈຸລັງ.

To quantify kinetic rates reliably, the signal response during association should be concentration-dependent, increasing with higher analyte concentrations.
ລະດັບຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນສູງສຸດຄວນຈະໄປເຖິງພູພຽງ, ເຊິ່ງຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າການຜູກມັດຄົງທີ່ບັນລຸໄດ້. dissociation ຈໍາເປັນຕ້ອງດໍາເນີນການຍາວພຽງພໍທີ່ຈະ unbind ພາກສ່ວນທີ່ສໍາຄັນຂອງ bound analyte (ຫຼາຍກ່ວາ 5%) ເພື່ອໃຫ້ສາມາດ fitting ທີ່ເຊື່ອຖືໄດ້ຂອງເສັ້ນໂຄ້ງ.
ໃຊ້ຕົວກໍານົດການເລີ່ມຕົ້ນໃນເງື່ອນໄຂການວິເຄາະເປັນຈຸດເລີ່ມຕົ້ນແລະປັບຕົວຕໍ່ໄປໂດຍອີງຕາມຜົນໄດ້ຮັບຂອງທ່ານ.

Example 1. ຂັ້ນຕອນການເຮັດວຽກທີ່ແນະນຳ

ຂັ້ນຕອນການເຮັດວຽກຂອງການວິເຄາະອະນຸຍາດໃຫ້ຜູ້ໃຊ້ສາມາດຈັດແຖວວິທີການວັດແທກແລະບໍາລຸງຮັກສາໂດຍອີງໃສ່ຄວາມຕ້ອງການທົດລອງສະເພາະຂອງເຂົາເຈົ້າ.

ຂັ້ນຕອນການເຮັດວຽກຂອງການວິເຄາະອາດຈະປະກອບມີຂັ້ນຕອນຕໍ່ໄປນີ້ໃນຄໍາສັ່ງທີ່ລະບຸໄວ້:

Prime (ຊິບບໍາລຸງຮັກສາ)
scIC Kinetics (Cells A, Analyte A, Cyto chip)
ການລ້າງລະບົບ (ຊິບບໍາລຸງຮັກສາ)
scIC Kinetics (Cells B, Analyte A, Cyto chip)
ການລ້າງລະບົບ (ຊິບບໍາລຸງຮັກສາ)
ການວິເຄາະພຽງແຕ່ configured scIC Kinetics (Analyte A, Cyto chip)
- ຂັ້ນຕອນ Prime ແລະ System Wash ແມ່ນດໍາເນີນຢູ່ໃນຊິບບໍາລຸງຮັກສາ. A System Wash ແມ່ນລວມຢູ່ໃນເວລາທີ່ສະຫຼັບກັບເສັ້ນຈຸລັງທີ່ແຕກຕ່າງກັນແລະກ່ອນທີ່ຈະດໍາເນີນການທົດສອບການວິເຄາະພຽງແຕ່ໃນຕອນທ້າຍຂອງຂັ້ນຕອນການເຮັດວຽກ.
- ສໍາລັບລາຍລະອຽດເພີ່ມເຕີມ, ເບິ່ງພາກກ່ຽວກັບການລ້າງລະບົບ Cyto ໃນຄູ່ມືຕົ້ນຕໍ.
- ເມື່ອຈັດຄິວນິກວິນິດໄສກ່ຽວກັບຈຸລັງ, ພິຈາລະນາຄວາມເປັນໄປໄດ້ຂອງເຊນ, ເຊິ່ງຂຶ້ນກັບສາຍເຊນ.
- ສໍາລັບເສັ້ນເຊລທີ່ລະອຽດອ່ອນ, ມັນແນະນໍາໃຫ້ດໍາເນີນການພຽງແຕ່ 1-2 ການວິເຄາະຕໍ່ຂັ້ນຕອນການເຮັດວຽກຂອງການວິເຄາະ. ສໍາລັບເສັ້ນຈຸລັງທີ່ທົນທານຫຼາຍ, ການວິເຄາະເພີ່ມເຕີມສາມາດຖືກຈັດຄິວ.
- ໝາຍເຫດ: ສໍາລັບການວິເຄາະເພີ່ມເຕີມ, ກະກຽມການແກ້ໄຂເຊນໃນ vials ແຍກຕ່າງຫາກໂດຍການຕັ້ງຊື່ຈຸລັງທີ່ແຕກຕ່າງກັນ.
- ໃຫ້ແນ່ໃຈວ່າ reagents ທັງຫມົດແມ່ນສົດແລະການກັ່ນຕອງຜ່ານການກັ່ນຕອງ 0.22 µm. ສຸດທ້າຍ, ເອົາທາດປະສົມທີ່ກຽມໄວ້ໃສ່ໃນເຄື່ອງມືຕາມຄໍາແນະນໍາຂອງ heliOS.
- ການແລ່ນສາມາດເລີ່ມຕົ້ນໄດ້ໂດຍການຄລິກທີ່ໄອຄອນລູກສອນສີຟ້າ "ແລ່ນ" ແລະປະຕິບັດຕາມຂັ້ນຕອນໃນຕົວຊ່ວຍສ້າງການເລີ່ມຕົ້ນຂອງການວິເຄາະ.
- ເມື່ອການແລ່ນໄດ້ເລີ່ມຕົ້ນແລ້ວ, ອຸປະກອນຈະເຮັດວຽກຢ່າງເປັນອິດສະຫຼະຈົນກວ່າຂັ້ນຕອນການເຮັດວຽກຂອງການວິເຄາະທັງໝົດຈະສຳເລັດ.

ການວິເຄາະການທົດລອງ scIC

ຂັ້ນຕອນການວິເຄາະ scIC

ຂໍ້ມູນ scIC ສາມາດແຕກຕ່າງຈາກຂໍ້ມູນ biosensor ມາດຕະຖານເນື່ອງຈາກຄວາມຊັບຊ້ອນຕາມທໍາມະຊາດຂອງເຫດການທີ່ເກີດຂຶ້ນໃນຈຸລັງທີ່ຖືກຈັບຢູ່ເທິງຫນ້າຂອງ chip heliXcyto, ເຊິ່ງອາດຈະເຮັດໃຫ້ເກີດຄວາມຜິດປົກກະຕິຂອງ sensorgram.

ດັ່ງນັ້ນ, ການຄວບຄຸມຄຸນນະພາບແມ່ນເນັ້ນຫນັກສໍາລັບຮູບພາບທີ່ຖືກບັນທຶກໃນແຕ່ລະຂັ້ນຕອນການວັດແທກແລະສໍາລັບ sensorgrams ທີ່ຜະລິດຢູ່ໃນຫນ້າດິນຂອງການວິເຄາະອັດຕະໂນມັດ.
ນອກຈາກນັ້ນ, heliOS ສະຫນອງເຄື່ອງມືເພື່ອແກ້ໄຂຄວາມບໍ່ສະຫມໍ່າສະເຫມີຂອງ sensorgram ໃນລະຫວ່າງການວິເຄາະຂໍ້ມູນຄູ່ມື scIC.

ຂະບວນການວິເຄາະຂໍ້ມູນ scIC:

ການກວດສອບຮູບພາບ:
- ກວດສອບຮູບພາບທັງຫມົດທີ່ໄດ້ຮັບການເກັບກໍາໃນທົ່ວການວັດແທກ (ແຖບຮູບພາບຢູ່ໃນປ່ອງຢ້ຽມທົດລອງ).
- ມີຈັກຈຸລັງທີ່ຄົງຕົວຢູ່ໃນຈັ່ນຈັບຕະຫຼອດການວັດແທກທັງໝົດ?
- ສະຖານະຂອງຈຸລັງແມ່ນຫຍັງ? ກວດເບິ່ງຄວາມສົມບູນຂອງເມັດ ແລະ ຄວາມສົມບູນຂອງເຊນ.
- ໃສ່ກັບດັກສະອາດຫຼັງຈາກຂັ້ນຕອນການຟື້ນຟູບໍ?

ການກວດສອບຂໍ້ມູນດິບ:
- ກວດເບິ່ງຂໍ້ມູນດິບສໍາລັບຈຸດອ້າງອີງ 1 ແລະຈຸດວັດແທກ 2
- ສັນຍານຂອງຈຸດສູງສຸດຂອງ normalization ຄວນຢູ່ໃກ້ຫຼືສູງກວ່າສັນຍານຂໍ້ມູນດິບທີ່ສູງທີ່ສຸດ.
- ສັນຍານກັບຄືນສູ່ລະດັບພື້ນຖານຂອງທັງສອງຈຸດ, ຫຼືມີຫຼັກຖານຂອງການຜູກມັດທີ່ບໍ່ແນ່ນອນບໍ?
ການກວດສອບຂໍ້ມູນປົກກະຕິ:
- ການສີດໂດດສໍາລັບຈຸດ 1 ແລະຈຸດ 2 ວາງຊ້ອນກັນຢ່າງຖືກຕ້ອງບໍ?

ການກວດສອບຂໍ້ມູນອ້າງອີງ:
- ຂັ້ນຕອນການຟື້ນຟູເອົາສັນຍານກັບຄືນສູ່ພື້ນຖານບໍ? ຖ້າບໍ່, ກວດເບິ່ງວ່າມີຈຸລັງຫຼືສິ່ງເສດເຫຼືອຢູ່ໃນໃສ່ກັບດັກຫຼັງຈາກການຟື້ນຟູໂດຍ reviewໃນຮູບພາບຕ່າງໆ.
- ມີຮວງ, outliers, ຫຼືຄວາມຜິດປົກກະຕິອື່ນໆໃນເສັ້ນໂຄ້ງທີ່ອ້າງອີງ? ຖ້າເປັນດັ່ງນັ້ນ, review ຮູບພາບເພື່ອກໍານົດສາເຫດທີ່ເປັນໄປໄດ້ແລະພິຈາລະນາການປັບຕົວດ້ວຍຕົນເອງ.

ກວດສອບຂໍ້ມູນໃຫ້ພໍດີ:
- ປະຕິບັດການປະເມີນຜົນຄຸນນະພາບສາຍຕາ
- ພໍດີອະທິບາຍພຶດຕິກຳຂອງເສັ້ນໂຄ້ງໄດ້ຢ່າງຖືກຕ້ອງ, ຫຼືເສັ້ນທີ່ພໍດີຂ້າມຜ່ານ sensorgram ບໍ?
- ຄວາມເໝາະສົມອະທິບາຍຄວາມໂຄ້ງຂອງຂໍ້ມູນໄດ້ຢ່າງຖືກຕ້ອງບໍ?
- ແມ່ນ amplitude ສອດຄ່ອງກັບຂໍ້ມູນອ້າງອີງ?

scIC ການວິເຄາະຂໍ້ມູນອັດຕະໂນມັດ

ການວິເຄາະອັດຕະໂນມັດຂອງ scIC ປະມວນຜົນຂໍ້ມູນດິບໄປຫາພື້ນທີ່ຄວບຄຸມຄຸນນະພາບ ແລະຂໍ້ມູນທີ່ພໍດີໄດ້ໃນພຽງສອງສາມຄລິກ.
1. ເປີດການທົດລອງ scIC ໂດຍການຄລິກສອງຄັ້ງໃສ່ການທົດລອງທີ່ເລືອກໃນລາຍການທົດລອງ
2. ຄລິກປຸ່ມການວິເຄາະສີຟ້າຂະໜາດໃຫຍ່ຢູ່ລຸ່ມສຸດຂອງແຖບທົດລອງ.
3. ຈາກຂັ້ນຕອນການເຮັດວຽກຂອງການທົດລອງ, ເລືອກການທົດສອບທີ່ທ່ານຕ້ອງການວິເຄາະ.
4. ເລືອກ Kinetics scIC ຈາກປະເພດການວິເຄາະທີ່ມີຢູ່ ແລະຄລິກຕໍ່ໄປ.
  - ໝາຍເຫດ: ຖ້າການທົດລອງຍັງດໍາເນີນຢູ່, ມີພຽງແຕ່ການວິເຄາະທີ່ສໍາເລັດແລ້ວຈະສະແດງຢູ່ໃນລາຍຊື່. ເມື່ອການທົດສອບຖືກເລືອກ, ປ່ອງຢ້ຽມຕໍ່ໄປຈະສະແດງປະເພດການວິເຄາະທີ່ມີຢູ່ສະເພາະກັບວິທີການ / ການທົດສອບທີ່ໃຊ້.
5. ຖ້າຕ້ອງການ, ຕັ້ງຄ່າການວິເຄາະຢູ່ໃນປ່ອງຢ້ຽມຕໍ່ໄປນີ້. ຮູບແບບການປັບໃຫ້ພໍດີໃນຕອນຕົ້ນແມ່ນ "Kinetics – ລະດັບສິ້ນສຸດຟຣີ" ທີ່ມີປ່ອງຢ້ຽມຢາມ "Force fit end ລະດັບສູນ" activated. ຫັນໄປຈາກຕົວແບບນີ້ພຽງແຕ່ຖ້າຊີວະວິທະຍາ ຫຼືຂໍ້ມູນຕ້ອງການຄຳອະທິບາຍທີ່ຊັບຊ້ອນກວ່າ.
6. ເມື່ອການກຳນົດຄ່າສຳເລັດແລ້ວ, ຄລິກວິເຄາະເພື່ອເບິ່ງຮູບຖ່າຍທີ່ມາຈາກທັງໝົດ, ເຊັນເຊີດິບ ແລະ ປະມວນຜົນ, ແລະຄ່າ kinetics.
ເນື່ອງຈາກຄວາມຊັບຊ້ອນປະກົດຂຶ້ນຂອງ samples ທີ່ໃຊ້ສໍາລັບການວິເຄາະ scIC, sensorgrams ຜົນໄດ້ຮັບສາມາດມີຄວາມສະຫມໍ່າສະເຫມີ.

ເພື່ອແກ້ໄຂບັນຫານີ້, ການຄວບຄຸມຄຸນນະພາບຂອງຮູບພາບແລະ sensorgrams ແມ່ນເນັ້ນໃສ່ໃນການວິເຄາະອັດຕະໂນມັດ.
ຖ້າການແກ້ໄຂດ້ວຍມືຫຼືການວິເຄາະເລິກຫຼາຍແມ່ນຕ້ອງການ, ເຄື່ອງມືສໍາລັບການແກ້ໄຂສິ່ງປະດິດໄດ້ຖືກສະຫນອງໃຫ້ຢູ່ໃນການວິເຄາະຄູ່ມື Scratchpad.

heliXcyto Maintenance ແລະ Decontamination

ການບໍາລຸງຮັກສາ heliXcyto ເປັນສິ່ງຈໍາເປັນເພື່ອຮັບປະກັນການປະຕິບັດທີ່ດີທີ່ສຸດຂອງເຄື່ອງມືແລະອາຍຸຍືນ. ການຮັກສາເປັນປົກກະຕິປະກອບມີຂັ້ນຕອນການທໍາຄວາມສະອາດທີ່ປ້ອງກັນການປົນເປື້ອນແລະຮັກສາຄວາມສົມບູນຂອງລະບົບ, ເຮັດໃຫ້ຜົນໄດ້ຮັບທີ່ຖືກຕ້ອງແລະການດໍາເນີນງານລຽບງ່າຍ. ການດູແລທີ່ສອດຄ່ອງແມ່ນສໍາຄັນຕໍ່ຄວາມຫນ້າເຊື່ອຖືຂອງເຄື່ອງມືແລະຄຸນນະພາບຂອງຜົນການທົດລອງ.
ການບໍາລຸງຮັກສາ heliXcyto ປະກອບມີສອງຂັ້ນຕອນທີ່ສໍາຄັນ: ການລ້າງລະບົບ Cyto, ເຊິ່ງສາມາດປະສົມປະສານໂດຍກົງເຂົ້າໃນຂັ້ນຕອນການເຮັດວຽກຂອງການວິເຄາະ, ແລະ Clean & Sleep, ເຊິ່ງຖືກປະຕິບັດເປັນປະຈໍາແຍກຕ່າງຫາກເພື່ອຮັກສາເຄື່ອງມືທີ່ຖືກຕ້ອງກ່ອນທີ່ຈະນໍາໃຊ້ຫຼັງຈາກການວັດແທກຄືນທີ່ຜ່ານມາຫຼືເມື່ອບໍ່ໄດ້ໃຊ້ຫຼາຍກວ່າ 2 ມື້.

ທັງການລ້າງລະບົບ ແລະ ການລ້າງ ແລະ ການນອນ ຮຽກຮ້ອງໃຫ້ມີການມີຊິບບຳລຸງຮັກສາ heliX® ໃນຖາດຊິບ.

ຄວາມສະອາດ & ນອນເປັນປົກກະຕິ

ການທໍາຄວາມສະອາດ & ນອນເປັນປົກກະຕິແມ່ນຫມາຍເຖິງການທໍາຄວາມສະອາດແລະການປິດອຸປະກອນ / ການເກັບຮັກສາ. ວິທີການລ້າງທໍ່ນ້ໍາຂອງອຸປະກອນ heliX® ທໍາອິດດ້ວຍນ້ໍາບໍລິສຸດແລະຫຼັງຈາກນັ້ນດ້ວຍ 70% ethanol. ສຸດທ້າຍ, ທໍ່ທັງຫມົດຖືກລະບາຍອາກາດ.
ຂັ້ນຕອນການທໍາຄວາມສະອາດນີ້ແມ່ນອັດຕະໂນມັດຢ່າງເຕັມສ່ວນແລະໃຊ້ເວລາປະມານ 40 ນາທີ. ໃນລະຫວ່າງຂັ້ນຕອນ, ethanol ໄດ້ຖືກຂັບເຂົ້າໄປໃນຂວດນ້ໍາ, ດັ່ງນັ້ນເນື້ອໃນຂອງຂວດຄວນໄດ້ຮັບການຍົກເລີກຫຼັງຈາກນັ້ນ.

ຫຼັງຈາກ Clean & Sleep, ເຄື່ອງມືຈະເຂົ້າສູ່ໂໝດນອນ ແລະບໍ່ສາມາດນຳໃຊ້ໄດ້ຈົນກວ່າຈະເຮັດ Wake Up & Prime. ຕ້ອງໃຊ້ຊິບບຳລຸງຮັກສາ heliX® ສໍາລັບທັງສອງແລ່ນ.
ສຳຄັນ: ເພື່ອປ້ອງກັນການປົນເປື້ອນຂອງທໍ່, ໃຫ້ແນ່ໃຈວ່າໄດ້ຖິ້ມເນື້ອໃນຂອງຂວດນ້ໍາ (ປະສົມນ້ໍາ / ເອທານອນ) ແລະລ້າງຖັງຂີ້ເຫຍື້ອຫຼັງຈາກຂັ້ນຕອນການທໍາຄວາມສະອາດ.

ການປິດເຄື່ອງແລະການເກັບຮັກສາໃນໄລຍະຍາວ

ສໍາລັບໄລຍະເວລາທີ່ບໍ່ໄດ້ໃຊ້ຕໍ່ໄປ, ກະລຸນາເອົາຂວດທີ່ມີນ້ໍາແລະເອທານອນອອກຫຼັງຈາກຂັ້ນຕອນການເຮັດຄວາມສະອາດ & ນອນອອກຈາກຖາດປ້ອງກັນແລະປະໄວ້ທໍ່ກັບອາກາດ.

ເອົາ chip ການບໍາລຸງຮັກສາ heliX® ອອກ, ແລະເກັບຮັກສາໄວ້ໃນຖົງຕົ້ນສະບັບຂອງມັນ. ນີ້ປ້ອງກັນບໍ່ໃຫ້ backflow ແລະການປົນເປື້ອນ. ປິດອຸປະກອນ.

ລ້າງລະບົບ Cyto

heliXcyto System Wash ຢ່າງກວ້າງຂວາງເຮັດຄວາມສະອາດລະບົບ microfluidic ໂດຍໃຊ້ Cleaning Solution 3 (CS3) ໃນເວລາປະມານ 45 ນາທີ. CS3 ຖືກເກັບຂຶ້ນໃນສອງ stages. ເຂັມທໍາອິດ ແລະ sample loop ຖືກຕື່ມໃສ່ແລະ incubated ເພື່ອເອົາສິ່ງປົນເປື້ອນໃດໆ.
ໝາຍເຫດ: ດໍາເນີນການ Cyto System Wash ຢ່າງຫນ້ອຍປະຈໍາວັນໃນເວລາທີ່ອຸປະກອນກໍາລັງໃຊ້. ພວກເຮົາແນະນໍາໃຫ້ເພີ່ມວິທີການລ້າງລະບົບ Cyto ເຂົ້າໄປໃນຂັ້ນຕອນການເຮັດວຽກຂອງການວິເຄາະບໍ່ວ່າຈະຫຼັງຈາກແຕ່ລະການວິເຄາະ (ເມື່ອປ່ຽນໄປຫາເສັ້ນໃຫມ່ຫຼືຖ້າ s.ample ຄຸນນະພາບແມ່ນ suboptimal) ຫຼືໃນຕອນທ້າຍຂອງການເຮັດວຽກການທົດສອບ. ແລກປ່ຽນຊິບການບຳລຸງຮັກສາຫຼັງການລ້າງລະບົບ Cyto ສູງສຸດ 50 ຄັ້ງທີ່ສະແດງເປັນຈຳນວນການສືບພັນໃນຖາດຊິບ view ຂອງການຄວບຄຸມອຸປະກອນ.

ຕິດຕໍ່

Dynamic Biosensors GmbH
Perchtinger Str. 8/10
81379 ມິວນິກ
ເຢຍລະມັນ
Bruker ວິທະຍາສາດ LLC
40 ຖະໜົນ Manning, Manning Park
Billerica, MA 01821

ສະຫະລັດ

ຂໍ້ມູນການສັ່ງຊື້ order.biosensors@bruker.com
ສະຫນັບສະຫນູນດ້ານວິຊາການ support.dbs@bruker.com
www.dynamic-biosensors.com
ເຄື່ອງມືແລະຊິບແມ່ນວິສະວະກໍາແລະຜະລິດຢູ່ໃນເຢຍລະມັນ.
ສໍາລັບການນໍາໃຊ້ການຄົ້ນຄວ້າເທົ່ານັ້ນ. ບໍ່ແມ່ນສໍາລັບການນໍາໃຊ້ໃນຂັ້ນຕອນການວິນິດໄສທາງດ້ານການຊ່ວຍ.

FAQ

FAQs scIC

ຂ້ອຍສາມາດໃຊ້ຊິບ heliXcyto ຄືນໃໝ່ໄດ້ບໍ?

ແມ່ນແລ້ວ, ຊິບ heliXcyto ແມ່ນໃຊ້ຄືນໄດ້ ແລະໃຊ້ແລ້ວຖິ້ມໄດ້. ປະຕິບັດຕາມຄໍາແນະນໍາການເຮັດຄວາມສະອາດແລະການເກັບຮັກສາທີ່ເຫມາະສົມ.

ຈຸດປະສົງຂອງ Maintenance Chip ແມ່ນຫຍັງ?

Maintenance Chip ຖືກນໍາໃຊ້ສໍາລັບການທໍາຄວາມສະອາດ, ການທົດສອບ, ແລະການດໍາເນີນງານບໍາລຸງຮັກສາເພື່ອຮັບປະກັນການເຮັດວຽກທີ່ເຫມາະສົມຂອງລະບົບ.

ຂ້ອຍຄວນເຮັດຄວາມສະອາດອຸປະກອນເລື້ອຍໆເທົ່າໃດ?

ລະບົບນ້ໍາຂອງ heliXcyto ຖືກຮັກສາໄວ້ໃຫ້ສະອາດດ້ວຍວິທີການລ້າງລະບົບ Cyto ແລະເຮັດຄວາມສະອາດ & ນອນ. ລະບົບ microfluidic ໄດ້ຖືກແນະນໍາໃຫ້ເຮັດຄວາມສະອາດຜ່ານ Cyto System Wash ໃນ Chip ບໍາລຸງຮັກສາຫຼັງຈາກແຕ່ລະການທົດສອບ (ໂດຍສະເພາະໃນເວລາທີ່ປ່ຽນປະເພດເຊນ) ຫຼືຫລ້າສຸດໃນຕອນທ້າຍຂອງຂັ້ນຕອນການເຮັດວຽກຂອງການວິເຄາະ. ຂັ້ນຕອນ Clean&Sleep ແມ່ນຈະຖືກນໍາໃຊ້ຢ່າງຖືກຕ້ອງກ່ອນທີ່ຈະນໍາໃຊ້ຫຼັງຈາກການວັດແທກຍາວກ່ອນຫນ້ານີ້ (ເຊັ່ນ: ໃນຕອນເຊົ້າຫຼັງຈາກການທົດລອງຂ້າມຄືນ) ຫຼືໃນເວລາທີ່ heliXcyto ຈະບໍ່ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນເວລາຫຼາຍກວ່າ 2 ມື້ປິດ.

ວິທີແກ້ໄຂສາມາດເກັບຮັກສາໄດ້ດົນປານໃດ: RB 1 / water / CS 1 / CS 3 / Normalization solution ຈະຖືກເກັບໄວ້ໃນອຸປະກອນ?

ໂດຍທົ່ວໄປແລ້ວ, ກ່ອນທີ່ຈະວັດແທກແຕ່ລະ, ການແກ້ໄຂທັງຫມົດແມ່ນຕ້ອງໄດ້ຮັບການກວດກາສໍາລັບປະລິມານທີ່ຍັງເຫຼືອແລະສໍາລັບການ turbid ຫຼື precipitation ທີ່ເປັນໄປໄດ້. ໃນກໍລະນີດັ່ງກ່າວ, ການແກ້ໄຂຈໍາເປັນຕ້ອງໄດ້ແລກປ່ຽນທັນທີ. ນ້ໍາແລະ RB 1 ຈະຖືກທົດແທນປະຈໍາວັນແລະ RB 1 ຈະຖືກກັ່ນຕອງກ່ອນທີ່ຈະວັດແທກແຕ່ລະຄັ້ງ. Diluted Normalization solution ສາມາດໃຊ້ໄດ້ 2 ມື້ຕິດຕໍ່ກັນ. ການແກ້ໄຂການເຮັດຄວາມສະອາດມີຄວາມຫມັ້ນຄົງສໍາລັບປະມານ 3 ມື້.

ຂ້ອຍສາມາດໃຊ້ຊິບ heliXcyto ໄດ້ດົນປານໃດ?

ວັນໝົດອາຍຸຂອງຊິບ heliXcyto ສາມາດກວດສອບໄດ້ໃນແຖບ Chip tray ໃນພາກສ່ວນອຸປະກອນໃນ heliOS. ບໍ່ມີການຮັບປະກັນຄວາມສົມບູນຂອງຊິບສາມາດໃຫ້ໄດ້ຫຼັງຈາກວັນຫມົດອາຍຸ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ຕາບໃດທີ່ໃສ່ກັບດັກຍັງຄົງຢູ່, ພື້ນຜິວແມ່ນສະອາດ, ແລະພື້ນຫລັງ fluorescence ຕ່ໍາກວ່າການຕັດທີ່ລະບຸໄວ້ໃນ Chip Test, ຊິບແມ່ນຖືວ່າສາມາດໃຊ້ໄດ້ສໍາລັບການວັດແທກ. ການທໍາຄວາມສະອາດຊິບພາຍນອກເປັນປົກກະຕິ (ຊຸດທໍາຄວາມສະອາດຊິບ CCK-1-1 ແມ່ນແນະນໍາໃຫ້ປະຕິບັດຫຼັງຈາກການນໍາໃຊ້ຊິບເພື່ອຍືດອາຍຸຊິບໄດ້ຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ.

ຂ້ອຍສາມາດໃຊ້ຊິບ Maintenance ໄດ້ດົນປານໃດ?

ຊິບ Maintenance ແມ່ນຈໍາເປັນຕ້ອງໄດ້ປ່ຽນໃຫມ່ຫຼັງຈາກ 50 ການລ້າງລະບົບ (ນັບວ່າເປັນການສ້າງໃຫມ່ໃນແຖບ Chip tray ຂອງການຄວບຄຸມອຸປະກອນໃນ heliOS).

ການທົດສອບ heliXcyto Chip ຄວນຖືກປະຕິບັດເລື້ອຍໆເທົ່າໃດ?

ການທົດສອບຊິບເກັບຂໍ້ມູນກ່ຽວກັບພື້ນຫລັງ fluorescence, ຄວາມສະອາດ, ແລະຄວາມສົມບູນຂອງຊິບກ່ອນທີ່ຈະເລີ່ມການທົດລອງໃຫມ່. ມັນຈະຖືກປະຕິບັດຢ່າງຫນ້ອຍຫນຶ່ງຄັ້ງໃນເວລາທີ່ຊິບໃຫມ່ຖືກນໍາໃຊ້, ແຕ່ແນະນໍາໃຫ້ປະຕິບັດກ່ອນຫຼືໃນຕອນເລີ່ມຕົ້ນຂອງແຕ່ລະການທົດລອງເພື່ອກວດເບິ່ງສະຖານະຂອງຊິບ. ນີ້ເຮັດໃຫ້ເງື່ອນໄຂການວັດແທກຖືກປັບແລະຜິດປົກກະຕິໃນ sensorgrams ທີ່ຈະຕິດຕາມກັບຊິບຫຼືອຸປະກອນ.

ເຄມີການຕິດສະຫຼາກການວິເຄາະແມ່ນຫຍັງ?

ສີຍ້ອມ fluorescent ສີແດງຫຼືສີຂຽວ, ຕາມລໍາດັບ, ແມ່ນສົມທົບກັບຊຸດຕິດສະຫຼາກຂອງພວກເຮົາໂດຍຜ່ານ NHS-esters ກັບ amines ຕົ້ນຕໍໃນການວິເຄາະທາດໂປຼຕີນ (ເຊັ່ນ: lysines ຫຼື N-terminus). ລາຍລະອຽດແລະສ່ວນການແກ້ໄຂບັນຫາສາມາດພົບໄດ້ຢູ່ໃນ heliXcyto Labeling Kit red dye (Labeling Kit red dye 2 CY-LK-R2-1) ແລະ heliXcyto Labeling Kit Green dye (Labeling Kit green dye CY-LK-G1-1) ຄູ່ມືຈາກພວກເຮົາ. webຮ້ານ.

ບ່ອນທີ່ຈະຊອກຫາຂໍ້ມູນປະຈໍາຕົວຂອງ heliOS ແລະຂໍ້ມູນໃບອະນຸຍາດ?

ຂັ້ນຕອນການປ້ອນຂໍ້ມູນການຢັ້ງຢືນ ແລະໃບອະນຸຍາດແມ່ນໄດ້ອະທິບາຍໄວ້ໃນສ່ວນການຕິດຕັ້ງ heliOS ໃນຄູ່ມື heliXcyto ຈາກຂອງພວກເຮົາ. website (ຄູ່ມື heliXcyto). ຂໍ້ມູນໃບອະນຸຍາດຂອງທ່ານຄວນຈະຖືກບັນທຶກໄວ້ໃນໂຟເດີ scIC ໃນ heliXcyto PC Desktop, ເຊິ່ງຜູ້ຊ່ຽວຊານດ້ານຄໍາຮ້ອງສະຫມັກຂອງພວກເຮົາສ້າງຂື້ນໃນລະຫວ່າງການຝຶກອົບຮົມ.

ຊ່ວງຄວາມຕື່ນເຕັ້ນ/ການປ່ອຍອາຍພິດຂອງ heliXcyto ແມ່ນຫຍັງ?

ຄວາມຕື່ນເຕັ້ນໃນສີແດງແມ່ນ 605-625 nm, ການປ່ອຍອາຍພິດ (ການກວດພົບ) ແມ່ນ 655-685 nm. ຄວາມຕື່ນເຕັ້ນໃນສີຂຽວ 490-510 nm, ການປ່ອຍອາຍພິດໃນສີຂຽວແມ່ນ 525-575 nm.

ຂ້ອຍຕ້ອງວັດແທກການທົດລອງດຽວກັນສໍາລັບຄວາມຫນ້າເຊື່ອຖືທາງສະຖິຕິຫຼາຍປານໃດ?

ເພື່ອບັນລຸອັດຕາ kinetic ສະເລ່ຍທີ່ເຊື່ອຖືໄດ້, 3-4 ການຄ້າງຫ້ອງຂອງການວັດແທກ Kinetics 3 ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນແມ່ນແນະນໍາໃຫ້ປະຕິບັດໃນປະຊາກອນຈຸລັງທີ່ເປັນເອກະພາບ. ໃນຊຸດຂໍ້ມູນທີ່ສອດຄ່ອງກັນ, ອັດຕາການເຊື່ອມໂຍງແລະການແຍກຕົວແບບຈໍາລອງຄວນຈະຢູ່ໃນປ່ອງຢ້ຽມ 2-4 ເທື່ອ.

ຄວາມອ່ອນໄຫວຂອງການວັດແທກ scIC ແມ່ນຫຍັງ?

ຂອບເຂດຈໍາກັດການຊອກຄົ້ນຫາຕ່ໍາກວ່າໃນແງ່ຂອງການສະແດງອອກເປົ້າຫມາຍແມ່ນຂຶ້ນກັບການຕິດສະຫຼາກການວິເຄາະ, ແຕ່ໂດຍປົກກະຕິ scIC ສາມາດວັດແທກ kinetics ຢູ່ໃນຈໍານວນຫນ້ອຍເຖິງ 1000-10000 ໂມເລກຸນຕໍ່ຈຸລັງ. ເພື່ອເພີ່ມຄວາມອ່ອນໄຫວ, ຢ່າງຫນ້ອຍ 5 ຈຸລັງຖືກແນະນໍາໃຫ້ຖືກຈັບ, ແລະການວິເຄາະ DOL ຂອງ 5-10 ແລະພະລັງງານ LED ຈະຕ້ອງມີຄວາມສົມດູນເພື່ອບັນລຸຈໍານວນ fluorescence ສູງສຸດ.

ຂອບເຂດການກວດພົບຂອງ heliXcyto ໃນແງ່ຂອງອັດຕາ kinetic ແມ່ນຫຍັງ?

ກະລຸນາເບິ່ງສະເພາະດ້ານວິຊາການຂອງ heliXcyto ສໍາລັບຂໍ້ຈໍາກັດທາງດ້ານວິຊາການທີ່ທັນສະໄຫມທີ່ສຸດ, ຊຶ່ງສາມາດພົບເຫັນຢູ່ໃນຄູ່ມື heliXcyto (ຄູ່ມື heliXcyto). Dissociation constant Kd: 10 pM ຫາ 1 mM Association rate constant kon: 1E3 to 1E7 M-1s-1 Dissociation rate constant koff: 1E-6 ຫາ 1 s-1 ສໍາລັບລາຍລະອຽດກະລຸນາກວດເບິ່ງຄູ່ມື heliXcyto ຂອງພວກເຮົາຈາກພວກເຮົາ. webເວັບໄຊ.

ເອກະສານ / ຊັບພະຍາກອນ

dynamic BIOSENSORS heliX cyto ລະບົບການວິເຄາະຫ້ອງທົດລອງອັດຕະໂນມັດຢ່າງເຕັມສ່ວນ [pdf] ຄູ່ມືຜູ້ໃຊ້
heliX cyto ລະບົບການວິເຄາະຫ້ອງທົດລອງອັດຕະໂນມັດຢ່າງເຕັມສ່ວນ, heliX cyto, ລະບົບການວິເຄາະຫ້ອງທົດລອງອັດຕະໂນມັດຢ່າງເຕັມສ່ວນ, ລະບົບການວິເຄາະຫ້ອງທົດລອງອັດຕະໂນມັດ, ລະບົບການວິເຄາະຫ້ອງທົດລອງ, ລະບົບການວິເຄາະ, ລະບົບ

ເອກະສານອ້າງອີງ

ຄູ່ມືຜູ້ໃຊ້

dynamic BIOSENSORS heliX cyto ລະບົບການວິເຄາະຫ້ອງທົດລອງອັດຕະໂນມັດຢ່າງເຕັມສ່ວນ

ຂໍ້ມູນຜະລິດຕະພັນ